三阴性乳腺癌(TNBC)占所有乳腺癌(BC)患者的15%,是一种与预后不良相关的异质性肿瘤。在所有BC亚型中,TNBC显示出最高数量的肿瘤浸润淋巴细胞(TILs),这表明TNBC可以受益于免疫检查点封锁(ICB)。近年来以免疫检查点抑制剂(ICB)为代表的免疫治疗药物在多种肿瘤的治疗中取得了巨大成功,大大提升了部分肿瘤病人的生存率和生活质量,而ICB单药的新辅助治疗将很快成为BC治疗护理标准的一部分。
近日,比利时鲁汶大学DietherLambrechts等研究人员应用scRNA-seq,scTCR-seq和CITE-seq方法分析了免疫治疗前后肿瘤微环境内细胞组分的变化,从而鉴定出对免疫治疗有潜在贡献的特定细胞类型,特别是与T细胞克隆增殖相关联的细胞亚群。相关论文于年5月6日发表于NatureMedicine。
1.抗PD1治疗前和治疗后的单细胞分析
SINGLE-CELLPROFILINGBEFOREANDDURINGANTI-PD1TREATMENT
首先,作者进行了一项涉及早期诊断的BC的“机会窗口”研究(BioKey,NCT),在手术前大约9±2天,一组患有非转移性、未经治疗的原发性乳腺浸润性癌患者接受了一剂派姆单抗(Keytruda或抗PD1)治疗(图1a);对29例初诊患者,抗PD1治疗前后进行scRNA-seq和scTCR-seq,共获得,个高质量细胞,平均每个细胞检测9个基因,降维聚类后得到恶性乳腺上皮细胞、免疫细胞、内皮细胞和成纤维细胞几种主要细胞类群(图1b);使用scTCR-seq在51,个T细胞中定义了基于共享TCR序列的克隆型,在设定的共享序列细胞数大于2和大于5的两个阈值中,发现9个患者在治疗前后有明显的克隆扩增(图1c);将有克隆扩增和无克隆扩增的患者分别定义为Es和NEs,比较发现,NEs中成纤维细胞较多,Es中T细胞较多(图1d);单独对T细胞聚类,发现CD8+及CD4+亚群表达PD1(图1e,f);同时还检测到第三个由高增殖T细胞组成的PD1+亚群,它们的相对丰度在处理前和处理后均较高,但在处理后增加(图1g);TEX亚群在Es中克隆扩增能力显著增强(图1h),而且处理前后,Es的克隆型丰富度低于NEs(图1i);使用CITE-seq确认来自Es的预处理T细胞中PD1表达增加(图1j)。
图1通过scRNA-seq进行细胞和T细胞表型的BioKey研究设计和注释
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2.T细胞沿着CD8+TEX细胞,CD4+TH1和TFH克隆扩增
TCELLEXPANSIONALONGTHECD8+TEXCELL,CD4+TH1ANDTFHCELLTRAJECTORY
作者对CD8+T细胞进行发育轨迹分析,发现存在3个不同的分化方向(图2a);包括TEX1,TEX2细胞、驻留记忆CD8+T细胞(TRM)和激活效应或记忆T细胞(TEMRA细胞),TCR丰富度沿轨迹下降,并且克隆型通常在随后的T细胞表型之间共享(图2b);RNA速率分析证实了这些轨迹,标记基因的分析证实了它们的功能注释(图2c,d);无论是治疗前还是治疗后,TEX细胞在Es和NEs的轨迹末端富集更多,在所有轨迹中,Es的TCR丰富度低于NEs,与前处理相比,处理后的下降更明显,反映了抗PD1诱导的T细胞持续扩增(图2e);对CD4+T细胞进行发育轨迹分析,发现存在2个不同的分化方向,包括TH1和TFH(图2f);克隆型通常在随后的T细胞表型之间共享,RNA速率分析证实了这些轨迹(图2g,h);沿轨迹的标记基因和相关转录因子分析证实了它们的功能注释(图2i);NEs中的TH1和TFH细胞在治疗前和治疗后仍然处于早期的前效应或记忆状态,而Es中它们在轨迹的末端积累,TCR丰富度随着轨迹的结束而减少(图2j)。
图2CD8+和CD4+T细胞扩增轨迹分析
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3.T细胞克隆扩增过程中基因表达的变化
GENEEXPRESSIONCHANGESDURINGTCELLEXPANSION
作者发现了五组沿着CD8+TEX轨迹的差异表达基因(DEGs),且在每个基因集合中鉴定了几个以前未被识别的T细胞标记基因(图3a);虽然轨迹分配的细胞在相同的拟时间具有相似的表达,但也观察到一些基因在E和NE轨迹之间有差异表达(图3b);通路分析显示Es中干扰素(IFN)反应上调,氧化磷酸化下调(图3c,d);沿着CD4+TH1的轨迹,同样确定了5个基因集(图3e);与CD8+T细胞相似,NEs中RUNX3和CBFB减少,而Es中IFN-α/γ反应增加(图3f-h);因此,沿着轨迹的基因表达谱可以识别Es和NEs之间差异表达或激活的标记或通路。
图3CD8+TEX和CD4+TH1轨迹的差异表达基因
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4.T细胞的表达特征预测T细胞的扩增
EXPRESSIONSIGNATURESINTCELLPREDICTTCELLEXPANSION
接下来,作者鉴定了扩增的T细胞与未扩增的T细胞之间的差异基因(图4a);免疫检查点标记物和CD4+TH1活性在Es和NEs预处理中最能预测T细胞扩增(图4b);CITE-seq证实NEs中初始T细胞标记物高于Es,而免疫检查点、肿瘤反应和共刺激标记物减少(图4c);当Es、TNBC(n=5)与ER+BC(n=3)比较时,扩增的克隆型数量没有差异,而预处理后的T细胞中PD1的表达和增殖T细胞的数量在TNBC中更高(图4d,e);在TNBC中,Es表现出CD8+T细胞效应功能基因、CD4+TH1活性和免疫检查点基因的表达增加(图4f);分析了在抗PD1之前接受新辅助化疗的患者(队列2)的治疗前和治疗后活检对(n=11),使用与队列1相同的分析策略,将三名患者指定为Es(图4g);在Es中,T细胞和pDCs在治疗后增加,而治疗前不增加,PD1在治疗前和治疗后均增加(图4h,i);T细胞亚群分析证实CD4+和CD8+TEX细胞在Es中更常见,无论是治疗前还是治疗后(图4j)。
图4在BC和BC亚型中,增殖T细胞和非增殖T细胞特征
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5.树突状细胞与T细胞扩增相关
DENDRITICCELLSASSOCIATEDWITHTCELLEXPANSION
树突状细胞(DC)在调节CD8+T细胞免疫和肿瘤抗原耐受之间的平衡中起着核心作用,对来自仅接受抗PD1(n=29)治疗的患者的个DC进行聚类,共得到6个亚群(图5a);与NEs相比,Es致DC中PD-L1(CD)和PD-L2(PDCD1LG2)升高(图5b);免疫组化实验证实,治疗前和治疗后Es的PD-L1均较高(图5c);在DC亚型中,PD-L1仅由mregDC表达(图5d);治疗前的相对DC频率在Es和NEs之间没有差异,除了mregDCs在Es中富集(图5e);治疗前Es和NEs的DEGs显示出干扰素响应、DC分化、抗原交叉呈递和T细胞共刺激相关基因水平升高(图5f);在Es组中,pDCs,ASDCs和mregDCs富集频率明显升高(图5g);作者将个髓系细胞聚类后得到10个亚群,包括两个单核细胞群(C1和C2)和八个巨噬细胞群(C3-C10)(图5h);在治疗前的巨噬细胞中,Es中PD-L1/L2明显高于NEs,而一些细胞因子(CXCL9,CXCL10,CCL8)和I/II型IFN应答基因上调(图5i);CITE-seq证实Es与NEs治疗前共刺激标记物的表达增加(图5j);在细胞亚群水平,大多数巨噬细胞亚群表达PD-L1(图5k);在Es治疗前,C7_CX3CR1巨噬细胞处于耗竭状态,并在治疗后变得更加明显,而治疗后C3_CCR2巨噬细胞在Es富集(图5l)。
图5表达PD-L1的树突状细胞与T细胞扩增相关
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6.T细胞克隆扩增的肿瘤更容易受PD1治疗的影响
CANCERCELLSAREAFFECTEDBYANTI-PD1INTUMORSWITHTCELLEXPANSION
因为T细胞的活性依赖于癌细胞的肿瘤抗原呈递,作者研究了癌细胞,与治疗前相比,治疗后Es细胞数量减少(图6a);虽然作者未能在癌细胞中检测到PD-L1,但发现了许多抗原呈递主要组织相容性复合体(MHC)I/II类基因在NEs中下调(图6b,c);比较Es治疗前和治疗后,证实了正在进行的抗肿瘤免疫反应、细胞增殖、蛋白水解、细胞死亡、免疫信号通路和细胞*性通路富集于Es治疗后的癌细胞中(图6d);CD4+或CD8+TEX细胞、增殖T细胞、migDCs、表达PD-L1的巨噬细胞表型的相对频率与T细胞的扩增呈正相关,而初始或效应/记忆T细胞与抑制性巨噬细胞呈负相关(图6e);作者观察到,治疗前Es比NEs有更多的相互作用可能性,特别是在癌细胞、DCs、单核/巨噬细胞和T细胞之间(图6f);Es中CD8+或CD4+T细胞与其他免疫细胞之间的特异性相互作用,包括共刺激或共抑制相互作用(图6g,h);
图6交互免疫环境与T细胞扩增正相关
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7.结论和意义
CONCLUSIONSIGNIFICANCE
基于以上结果作者得到了BC患者新辅助抗PD1后T细胞扩增相关的治疗前免疫环境图谱。该资源可以为ICB后临床获益的潜在预测生物标志物提供见解。但需要进行多周期抗PD1联合化疗的后续研究,以确认这些生物标志物与临床反应之间的关联,并进一步探索与抗PD1协同使用的候选蛋白的靶向治疗。
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参考文献:
Bassez,A.,Vos,H.,VanDyck,L.etal.Asingle-cellmapofintratumoralchangesduringanti-PD1treatmentofpatientswithbreastcancer.NatMed27,–().
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